RUO HBcAb Elisa-Kit

Der RUO HBcAb ELISA-Test dient der qualitativen Detektion von Antikörpern gegen das Hepatitis-B-Virus-Kernantigen im menschlichen Serum/Plasma.

Als Teil der Hepadnaviridae-Familie ist HBV ein umhülltes, doppelsträngiges DNA-Virus, das eine Hauptursache für die Übertragung von Hepatitis durch Blut ist.Die Auswirkungen einer HBV-Infektion reichen von leichter bis schwerer Hepatitis, einschließlich chronischer Leberprobleme wie Karzinom und Zirrhose.die serologischen Marker müssen während der drei Infektionsphasen - Inkubationsphase - ermittelt werden.Der Hauptbestandteil des Virus ist das Hepatitis-B-Kernantigen (HBcAg).Dieses Kernantigen besteht aus einem einzigen Polypeptid von etwa 17 kD, das bei der Aufspaltung der Kernpartikel freigesetzt wird.. Mindestens ein immunologischer Determinant ist im Antigen vorhanden. Kurz nach Beginn von HBsAg erscheinen Antikörper gegen HBcAg (Anti-HBc-Gesamt-Antikörper und IgM) und verschwinden nie. In Einzelfällen,Eine Hepatitis-B-Infektion kann ohne immunologisch nachweisbare Anti-HBc-Antikörper aufgenommen werden.Durch das Screening auf Anti-HBc werden Daten zur Prävalenz von Hepatitis B in verschiedenen Populationen gewonnenDies liegt daran, dass Anti-HBc ein Marker für eine akute, chronische oder gelöste HBV-Infektion ist.Zusammen mit anderen Hepatitis-B-Tests, ermöglicht der Anti-HBc-Marker eine korrekte Diagnose und eine ordnungsgemäße Überwachung des Virusfortschritts.Anti-HBc kann möglicherweise der einzige Indikator für eine Hepatitis-B-Infektion sein (einschließlich anderer Tests von HBsAg-negativen Patienten).

Materialien und Komponenten

MICROPLAT:Kleine Mikrowellstreifen befestigt auf einem weißen Streifenhalter. Die Platte ist in einem Aluminiumbeutel mit Trocknungsmittel versiegelt. Jeder Brunnen enthält gereinigtes HBcAg. Die Mikrowellstreifen können getrennt verwendet werden.Nicht verwendete Bohrungen oder Streifen zusammen mit dem Trocknungsmittel in den mitgelieferten versiegelbaren Plastiksack legen und wieder auf 2-8°C bringen. Nach dem Öffnen stabil für einen Monat bei 2-8°C.

Negative Kontrolle:(1x1,0 ml pro Durchstechflasche)00,1% ProClinTM 300 Gelbliche Flüssigkeit in einer Durchstechflasche mit grünem Schraubverschluss gefüllt.Proteinstabilisierter Puffer ist nicht reaktiv auf HBcAb getestet. Bereit zur Verwendung wie geliefert. Nach dem Öffnen stabil für einen Monat bei 2-8°C.

Positive Kontrolle:(1x1,0 ml pro Durchstechflasche)00,1% ProClinTM 300 Rotfarbene Flüssigkeit in einer Durchstechflasche mit rotem Schraubverschluss gefüllt. HBcAb in proteinstabilisiertem Puffer verdünnt. Bereit zur Anwendung wie geliefert. Nach dem Öffnen stabil für einen Monat bei 2-8°C.

Konjugate:(1x6 ml pro Durchstechflasche)00,1% ProClinTM 300 Rotfarbene Flüssigkeit in einer weißen Durchstechflasche mit roter Schraubkappe.stabil für einen Monat bei 2-8°C.

Waschpuffer:(1x20 ml pro Flasche) VOR der Anwendung verdünnen! Reinigungsmittel Tween-20 Farblose Flüssigkeit in einer weißen Flasche mit weißer Schraubverschluss.PH 7.4, 20 × PBS Das Konzentrat muss verdünnt werden1 bis 19Nach Verdünnung stabil für eine Woche bei Raumtemperatur oder für zwei Wochen bei 2-8°C.

Substrat A:(1x6 ml pro Durchstechflasche) Farblose Flüssigkeit in einer weißen Durchstechflasche mit grünem Schraubverschluss gefüllt.

Substrat B:(1x6 ml pro Durchstechflasche) Farblose Flüssigkeit in einer schwarzen Durchstechflasche mit schwarzer Schraubverschluss.TMB (Tetramethylbenzidin) Lösung.

STOP-Lösung(1x6ml pro Durchstechflasche) Farblose Flüssigkeit in einer weißen Durchstechflasche mit weißem Schraubverschluss.₂So₄) Bereit zur Anwendung wie geliefert, nach dem Öffnen stabil für einen Monat bei 2-8°C.

Kunststoffsack mit Versiegelung:Für die Befestigung der nicht verwendeten Streifen 1 Einheit

Inserte der Verpackung1 Exemplar

KARDON-PLATEN-BEDACHUNG2 Blätter

Um die Platten während der Inkubation zu bedecken und Verdunstung oder Kontamination der Brunnen zu verhindern.

Verfahren

Reagenzien zur Zubereitung:Lassen Sie die Reagenzien Raumtemperatur (18-30°C) erreichen und verdünnen Sie den Waschpuffer (20X) wie in den Waschanweisungen angegeben.Verwenden Sie zum Verdünnen des Puffers destilliertes oder deionisiertes Wasser und nur saubere BehälterAlle anderen Reagenzien sindBereit zum Gebrauch.

1. Zubereitung:Die Mikroplattenbrunnen für die Kontrollprobe und die zu prüfende Patientenspiegel formatieren, unbenutzte Mikrowellstreifen wieder in die Aluminiumtüte versiegeln und bei 2-8°C aufbewahren.
2. Hinzufügen von Probe:50 μl der Kontrollprobe oder der Proben in die zugewiesene Brunnenfläche gesetzt.
3. Konjugate hinzufügen:Hinzufügen von 50 μlVerknüpftin jeden Brunnen außer dem Blank.
4. Inkubation:Decken Sie die Platte mit der Plattenhülle ab und brüten Sie für 30 Minutenbei 37°C.
5. Waschen:Am Ende der Inkubation entfernen und entsorgen Sie die Plattenhülle. Waschen Sie jede Brunne 5 Mal mit verdünntem Waschpuffer. Lassen Sie die Mikrowellen jedes Mal 30-60 Sekunden lang einweichen.Nach dem letzten Waschzyklus, schieben Sie die Platte auf Bleachpapier oder ein sauberes Handtuch und tippen Sie auf sie, um alle Rückstände zu entfernen.
6. Zusatz des Substrats:In jedem Brunnen werden 50 μl Substratlösung A und 50 μl Substratlösung B zugesetzt.10 Minuten.bei 37°C und ohne Licht.
7. Hinzufügen von Stop-Lösung:Mit einer Mehrkanalpipette oder manuell50μIch...Stop-Lösung in jede Brunne und sanft mischen.
8. Absorptionsmessung:Kalibrieren Sie den Plattenleser mit dem Blankwell und lesen Sie die Absorptionsmenge bei450 nmBei Verwendung eines doppelfilternden Geräts wird die Referenzwellenlänge auf630 nm. Berechnen Sie den Abschnittswert und bewerten Sie die Ergebnisse. (Anmerkung:Die Absorptionsmenge innerhalb10 Minuten.nach Beendigung der Reaktion).